PAC INFECTO-1 A5

Contenido | Anterior | Siguiente

Se estima que al menos en 70% de los pacientes con eosinofilia elevada (mayor de 20%´) en nuestro país se encuentra un origen parasitario
   En unos cuantos años las técnicas de biología molecular aplicadas en el diagnóstico y tratamiento de numerosas enfemedades han evolucionado de una mera curiosidad tecnológica a un vasto campo que está revolucionanado la práctica de la medicina y que eventualmente reemplazarán a los métodos actuales de diagnóstico. La parasitología ha sido el último campo de la microbiología clínica en incorporarlas y aunque se han desarrollado numerosos métodos y se han caracterizado numerosas secuencias para amplificación, pocos han logrado evaluaciones clínicas o estudios de campo a gran escala con excepción de Toxoplasma gondii, diferenciación de especies de plasmodio, plasmodios drogo-resistentes y cepas patógenas de Entamoeba histolytica existiendo la posibilidad de en muy poco tiempo contar con pruebas de uso clínico rutinario para Trypanosoma cruzi, Cryptosporidium, Babesia microti, Naegleria fowleri, Cysticercus cellulosae, Fasciola hepatica, Trichinella spiralis, Giardia lambia, Trichomonas vaginalis, Onchocerca volvulus y otros.
   Se estima que al menos en 70% de los pacientes con eosinofilia elevada (mayor de 20%´) en nuestro país se encuentra un origen parasitario; sin embargo esta generalización deberá de aclararse; en primer lugar los protozoarios y helmintos de localización exclusivamente intestinal no la generan; si la producen aquellos que llevan a cabo una migración tisular y que al final de su ciclo biológico se localizan fuera (Trichinella spiralis) o dentro (Fasciola hepatica) del tubo digestivo y los parásitos de animales que accidentalmente infectan al hombre (Toxocara canis).
   La obtención de muestras por medio de aspiración es un método de gran utilidad que puede revelar parásitos que por métodos convencionales no hubieran podido obtnerse; los más frecuentemente realizados son los de abcesos hepáticos pulmonares, bazo, médula ósea, líqudo cefalorraquídeo, ganglios linfáticos, abcesos diversos y úlceras cutáneas; el material obtenido deberá de procesarse de inmediatoutilizando diversas técnicas.


CUADRO 6. Helmintos

HELMINTO
MÉTODO DIAGNÓSTICO
MUESTRA
ESTADIO
Ascaris lumbricoides Examen directo
Ferreira cuantitativo
Materia fecal
Expectoración
Huevecillos, Adultos
Larvas
Ancylostoma duodenale Ferreira cuantitativo Tamizado Materia fecal Huevecillos, Adultos
Dipylidium caninum Faust Materia fecal Huevecillos
Enterobius vermicularis Graham Raspado perianal Huevecillos, Adultos
Fasciola hepática Sedimentación de Ritchie
Cápsula de Beal
Materia fecal
Aspirado duodenal o biliar
Huevecillos, Adultos
Hymemolepsis diminuta Faust Materia fecal Huevecillos
Hymemolepsis nana Faust Materia fecal Huevecillos
Necator americanus Ferreira cuantitativo
Tamizado
Materia fecal
(2500-5000 hgh)
Huevecillos, Adultos
Strongyloides stercoralis Faust, cápsula de Beal,
Hirada-Mori
Materia fecal
Aspirado duodenal
Larvas rabditiformes
Huevecillos
Taenia saginata Tamizado, tinciones Materia fecal Escólex, proglótidos
Taenia solium especiales Raspado perianal grávidos, huevecillos
Trichinella spiralis Faust, examen directo Materia fecal Adultos 1a semana
Trichuris trichiura Ferreira cuantitativo
Examen directo
Materia fecal (30,000 hgh)
Mucosa rectal
Huevecillos, Adultos


Contenido | Anterior | Siguiente